Akt prawny
archiwalny
Wersja archiwalna od 2015-08-08 do 2017-09-08
Wersja archiwalna od 2015-08-08 do 2017-09-08
archiwalny
ROZPORZĄDZENIE
MINISTRA ROLNICTWA I ROZWOJU WSI1)
z dnia 15 lipca 2015 r.
w sprawie szczegółowych wymagań dotyczących wytwarzania i jakości roślin sadowniczych, materiału szkółkarskiego CAC, materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego roślin warzywnych i ozdobnych oraz sadzonek winorośli, a także metod oceny polowej, pobierania prób i oceny laboratoryjnej oraz oceny tożsamości materiału siewnego kategorii elitarny lub kwalifikowany roślin sadowniczych2)
Na podstawie art. 72 pkt 1–3 ustawy z dnia 9 listopada 2012 r. o nasiennictwie (Dz. U. poz. 1512 oraz z 2013 r. poz. 865) zarządza się, co następuje:
§ 1.[Zakres regulacji] Rozporządzenie określa:
1) szczegółowe terminy składania wniosków o dokonanie oceny polowej materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych;
2) wymagania w zakresie wytwarzania i jakości materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych, materiału szkółkarskiego CAC, materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego roślin warzywnych i ozdobnych oraz sadzonek winorośli, z uwzględnieniem w szczególności:
a) terminów dokonywania i liczby ocen stanu plantacji materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych w odniesieniu do poszczególnych kategorii grup roślin lub gatunków,
b) metod dokonywania oceny laboratoryjnej w odniesieniu do poszczególnych kategorii, stopni kwalifikacji lub poszczególnych grup roślin lub gatunków,
c) liczby rozmnożeń dla poszczególnych grup lub gatunków roślin materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych, z uwzględnieniem opisu poszczególnych kategorii i stopni kwalifikacji,
d) izolacji przestrzennej od innych upraw, czystości gatunkowej i odmianowej, zdrowotności oraz zmianowania roślin, a także wieku roślin – dla materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych,
e) sposobu oznaczania partii materiału szkółkarskiego lub materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego roślin warzywnych i ozdobnych oraz sadzonek winorośli;
3) metody oceny polowej, pobierania prób i oceny laboratoryjnej oraz oceny tożsamości odmianowej materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych.
§ 2.[Wniosek o dokonanie oceny polowej materiału siewnego] Wniosek o dokonanie oceny polowej materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych składa się w roku, w którym dany materiał ma być poddany ocenie polowej, w terminach:
1) do dnia 10 marca – dla porzeczek i agrestu;
2) do dnia 30 maja – dla gatunków innych niż wymienione w pkt 1.
§ 3.[Plantacje materiału siewnego] 1. Plantacje materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych powinny być zakładane z zachowaniem:
1) izolacji przestrzennej, która ma na celu oddzielenie plantacji materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych od źródeł obcego pyłku lub chorób i szkodników pochodzących ze zbiorowisk roślin uprawnych oraz dziko rosnących, mogących stanowić źródło obcego pyłku;
2) szczegółowych wymagań dotyczących wytwarzania materiału siewnego poszczególnych gatunków roślin sadowniczych określonych w załączniku nr 4 do rozporządzenia.
2. Izolacja przestrzenna może być zmniejszona do połowy wymaganej odległości, jeżeli plantacja jest oddzielona od źródeł, o których mowa w ust. 1 pkt 1, lasem, wzgórzami lub wysokimi budynkami.
§ 4.[Ocena polowa materiału siewnego] 1. Ocena polowa materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych obejmuje jedną lub kilka ocen stanu plantacji, w zależności od potrzeby stwierdzenia spełnienia szczegółowych wymagań określonych w załączniku nr 4 do rozporządzenia.
2. Poszczególne oceny stanu plantacji są dokonywane w terminach wynikających ze szczegółowych wymagań określonych w załączniku nr 4 do rozporządzenia.
3. Podczas oceny polowej materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych sprawdzeniu podlegają w szczególności:
1) dołączona do wniosku o dokonanie oceny polowej dokumentacja;
2) zgodność informacji podanych we wniosku o dokonanie oceny polowej z dołączonymi do wniosku dokumentami oraz stanem faktycznym plantacji;
3) izolacja przestrzenna;
4) oznaczenie materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych;
5) przedplon;
6) wyrównanie roślin;
7) czystość gatunkowa i odmianowa;
8) wiek roślin;
9) pochodzenie ocenianych roślin;
10) zdrowotność, jakość i ilość roślin.
4. Do obliczania ilości materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych można stosować pomocniczo:
1) średnią obsadę na 1 m2 powierzchni lub 1 metr bieżący długości rzędów;
2) średnią wydajność z jednej rośliny;
3) szacunkowy plon owoców z drzew nasiennych.
§ 5.[Zakres oceny polowej materiału siewnego] 1. Podczas oceny polowej materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych w sadach, w których są pozyskiwane nasiona lub zrazy, przeprowadza się ocenę wszystkich roślin.
2. Podczas oceny polowej materiału siewnego kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych innego niż wymieniony w ust. 1 dokonuje się ogólnego sprawdzenia wszystkich roślin oraz przeprowadza się ocenę szczegółową na jednostce kwalifikacyjnej, którą stanowią kolejne rośliny w jednym lub kilku rzędach albo 10% roślin każdej partii materiału siewnego kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych, zgłoszonej do oceny.
3. W przypadku braku wyrównania materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych, w ocenianej partii można wyznaczyć kolejne jednostki kwalifikacyjne.
4. Jeżeli plantacja lub jej część, lub partia materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych nie spełniają wymagań dla kategorii i stopnia kwalifikacji wskazanych we wniosku o dokonanie oceny polowej, to są oceniane w kategorii i stopniu kwalifikacji, dla których spełniają szczegółowe wymagania określone w załączniku nr 4 do rozporządzenia.
§ 6.[Ocena laboratoryjna drzew w sadach] 1. Ocenę laboratoryjną drzew w sadach do pozyskiwania nasion wykonuje się, stosując test ELISA.
2. Test ELISA wykonuje się na obecność wirusa karłowatości śliwy (Prune dwarf virus, PDV) i wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni (Prunus necrotic ringspot virus, PNRSV).
3. Reprezentatywne próby do testu ELISA pobiera się późną zimą lub wczesną wiosną, nie później jednak niż przed kwitnieniem drzew. Z każdego drzewa nasiennego pobiera się cztery pędy, każdy pęd z innej strony drzewa.
4. Test ELISA wykonuje się na liściach i kwiatach lub pąkach uzyskanych z pędów przetrzymywanych przez okres od 2 do 3 tygodni w wodzie o temperaturze 18–25°C.
5. Pierwszy test ELISA wykonuje się na 3-letnich drzewach, pobierając próby zbiorcze z czterech kolejnych drzew nasiennych. Kolejne testy ELISA wykonuje się co 4 lub co 6 lat, w zależności od zachowanej izolacji przestrzennej wynikającej ze szczegółowych wymagań określonych w załączniku nr 4 do rozporządzenia, pobierając próby zbiorcze z dwóch kolejnych drzew nasiennych.
6. Jeżeli w próbie zbiorczej zostaną stwierdzone wirusy, o których mowa w ust. 2, test ELISA wykonuje się, pobierając próby z każdego drzewa.
§ 7.[Ocena tożsamości odmianowej materiału siewnego] 1. Oceny tożsamości odmianowej materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych dokonuje się, prowadząc obserwacje cech danej odmiany.
2. Obserwowane cechy odmiany porównuje się z opisem odmiany dokonanym przez jednostkę zajmującą się rejestracją lub z wzorcem tej odmiany.
3. Ocenę tożsamości odmianowej dla jednej odmiany przeprowadza się co najmniej na:
1) czterech drzewkach;
2) sześciu krzewach;
3) dwunastu roślinach truskawek.
4. Ocenę tożsamości odmianowej materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych kończy się po pierwszym roku owocowania tych roślin, w którym można dokonać porównania określonego w ust. 2.
§ 8.[Oznaczenie partii materiału roślin warzywnych, ozdobnych i winorośli] Partie materiału szkółkarskiego, w tym materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych i materiału szkółkarskiego CAC, a także partie materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego roślin warzywnych i ozdobnych oraz partie sadzonek winorośli oznacza się w sposób umożliwiający identyfikację tego materiału, w tym przez podanie dnia, tygodnia, miesiąca i roku wprowadzenia go do obrotu, wskazanie gatunku, odmiany lub podkładki, z których ten materiał został wyprodukowany, lub podanie literowego lub cyfrowego oznaczenia własnego podmiotu.
§ 9.[Opis kategorii i stopni kwalifikacji materiału siewnego] Opis kategorii i stopni kwalifikacji materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych jest określony w załączniku nr 1 do rozporządzenia.
§ 10.[Szczegółowe wymagania dotyczące wytwarzania i jakości materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego roślin warzywnych] Szczegółowe wymagania dotyczące wytwarzania i jakości materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego roślin warzywnych są określone w załączniku nr 2 do rozporządzenia.
§ 11.[Szczegółowe wymagania dotyczące wytwarzania i jakości materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego roślin ozdobnych] Szczegółowe wymagania dotyczące wytwarzania i jakości materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego roślin ozdobnych są określone w załączniku nr 3 do rozporządzenia.
§ 12.[Szczegółowe wymagania dotyczące wytwarzania i jakości materiału roślin sadowniczych oraz materiału szkółkarskiego CAC] Szczegółowe wymagania dotyczące wytwarzania i jakości materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych oraz materiału szkółkarskiego CAC są określone w załączniku nr 4 do rozporządzenia.
§ 13.[Szczegółowe wymagania dotyczące wytwarzania i jakości sadzonek winorośli] Szczegółowe wymagania dotyczące wytwarzania i jakości sadzonek winorośli są określone w załączniku nr 5 do rozporządzenia.
§ 14.[Wejście w życie] Rozporządzenie wchodzi w życie z dniem następującym po dniu ogłoszenia.3)
Minister Rolnictwa i Rozwoju Wsi: wz. K. Plocke
1) Minister Rolnictwa i Rozwoju Wsi kieruje działem administracji rządowej - rolnictwo, na podstawie § 1 ust. 2 pkt 1 rozporządzenia Prezesa Rady Ministrów z dnia 22 września 2014 r. w sprawie szczegółowego zakresu działania Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi (Dz. U. poz. 1261).
2) Przepisy niniejszego rozporządzenia wdrażają:
1) postanowienia dyrektywy Komisji 93/49/EWG z dnia 23 czerwca 1993 r. określającej wykazy wskazujące warunki, jakie mają zostać spełnione przez materiał rozmnożeniowy roślin ozdobnych oraz rośliny ozdobne, zgodnie z dyrektywą Rady 91/682/EWG (Dz. Urz. WE L 250 z 07.10.1993, str. 9, z późn. zm.; Dz. Urz. UE Polskie wydanie specjalne, rozdz. 3, t. 15, str. 91);
2) częściowo postanowienia dyrektywy Komisji 93/61/EWG z dnia 2 lipca 1993 r. określającej wykazy wskazujące warunki, jakie mają być spełnione przez materiał rozmnożeniowy i nasadzeniowy warzyw, inny niż nasiona, zgodnie z dyrektywą Rady 92/33/EWG (Dz. Urz. WE L 250 z 07.10.1993, str. 19; Dz. Urz. UE Polskie wydanie specjalne, rozdz. 3, t. 15, str. 101).
3) Niniejsze rozporządzenie było poprzedzone:
1) rozporządzeniem Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 10 listopada 2006 r. w sprawie sposobu oznaczania partii materiału siewnego (Dz. U. Nr 209, poz. 1546),
2) rozporządzeniem Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 20 listopada 2006 r. w sprawie terminów składania wniosków o dokonanie oceny polowej materiału siewnego poszczególnych grup roślin lub gatunków (Dz. U. Nr 221, poz. 1623),
3) rozporządzeniem Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 1 lutego 2007 r. w sprawie szczegółowych wymagań dotyczących wytwarzania i jakości materiału siewnego (Dz. U. Nr 29, poz. 189, Nr 110, poz. 764 i Nr 189, poz. 1358, z 2008 r. Nr 29, poz. 173 i Nr 183, poz. 1136, z 2009 r. Nr 130, poz. 1071 oraz z 2010 r. Nr 56, poz. 347 i Nr 183, poz. 1230)
- które tracą moc na podstawie art. 139 ustawy z dnia 9 listopada 2012 r. o nasiennictwie (Dz. U. poz. 1512 oraz z 2013 r. poz. 865) z dniem wejścia w życie niniejszego rozporządzenia.
Załączniki do rozporządzenia Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi
z dnia 15 lipca 2015 r. (poz. 1124)
Załącznik nr 1
OPIS KATEGORII I STOPNI KWALIFIKACJI MATERIAŁU SIEWNEGO KATEGORII ELITARNY LUB KATEGORII KWALIFIKOWANY ROŚLIN SADOWNICZYCH
Kategoria | Stopnie kwalifikacji | ||
nazwa stopnia i symbol |
| ||
rośliny sadownicze (w tym winorośl) | agrest, malina, porzeczka, truskawka | opis | |
Elitarny | przedbazowy (PB) | superelita (SE) | Materiał rozmnożeniowy, który: 1) został wytworzony zgodnie z działaniami zapewniającymi zachowanie właściwych cech tej odmiany oraz ochrony przed porażeniem chorobami i szkodnikami w warunkach kontrolowanych; 2) jest przeznaczony do produkcji materiału bazowego; 3) został uznany po urzędowej ocenie za spełniający wymagania szczegółowe. |
bazowy (B) | elita 1 (E1) | Materiał rozmnożeniowy, który: 1) został wytworzony zgodnie z działaniami zapewniającymi zachowanie właściwych cech tej odmiany oraz ochrony przed porażeniem chorobami i szkodnikami; 2) jest przeznaczony do produkcji materiału kategorii kwalifikowany; w przypadku agrestu, maliny, porzeczek i truskawki jest to rozmnożenie dwukrotne; 3) został uznany po urzędowej ocenie za spełniający wymagania szczegółowe. | |
elita 2 (E2) | |||
Kwalifikowany (C) | oryginał (O) | Materiał rozmnożeniowy, w szczególności zrazy, podkładki, nasiona, sadzonki oraz materiał nasadzeniowy, który: 1) został wytworzony z materiału kategorii elitarny; 2) jest przeznaczony do rozmnażania lub do nasadzeń owocujących; 3) został uznany po urzędowej ocenie za spełniający wymagania szczegółowe. |
Załącznik nr 2
SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA I JAKOŚCI MATERIAŁU ROZMNOŻENIOWEGO I NASADZENIOWEGO ROŚLIN WARZYWNYCH
1. Wymagania dotyczące wytwarzania materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego roślin warzywnych:
1) w trakcie wytwarzania materiał rozmnożeniowy i nasadzeniowy roślin wykazujący widoczne oznaki lub objawy występowania organizmów szkodliwych lub chorób wymienionych w ust. 2 pkt 6 zostaje poddany właściwym zabiegom chemicznym lub usunięty;
2) podczas uprawy materiał powinien być utrzymywany w oddzielnych partiach stanowiących zbiór jednostek materiału rozmnożeniowego lub nasadzeniowego, który można zidentyfikować na podstawie ich jednorodnych cech;
3) partię, o której mowa w pkt 2, można tworzyć z materiału pochodzącego z różnych plantacji, jeżeli dostawca posiada dokumentację dotyczącą jej składu oraz pochodzenia poszczególnych składników;
4) materiał rozmnożeniowy i nasadzeniowy roślin warzywnych może być oferowany do sprzedaży i sprzedawany jako pojedyncze rośliny, w wiązkach, doniczkach, na paletach i multiplatach oraz w pojemnikach szklanych z produkcji in vitro.
2. Wymagania dotyczące jakości materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego roślin warzywnych:
Materiał rozmnożeniowy i nasadzeniowy powinien:
1) być praktycznie wolny od wad mogących obniżyć jego jakość;
2) charakteryzować się odpowiednią użytecznością, żywotnością oraz mieć właściwe rozmiary i być we właściwej fazie rozwoju, w odniesieniu do jego przydatności jako materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego;
3) zachowywać odpowiednią proporcję między korzeniami, łodygami i liśćmi;
4) mieć odpowiednią tożsamość, czystość rodzajową, gatunkową lub odmianową, za które odpowiada dostawca;
5) być wolny od organizmów kwarantannowych;
6) być praktycznie wolny od organizmów szkodliwych mających wpływ na jakość materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego roślin warzywnych:
Rodzaj lub gatunek | Szczególne organizmy szkodliwe i choroby |
–Allium ascalonicum | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Delia spp. – Ditylenchus dipsaci – przylżeńce, w szczególności Thrips tabaci |
grzyby: – Botrytis spp. – Peronospora destructor – Sclerotium cepivorum | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: wszystkie, w szczególności wirus żółtej karłowatości cebuli | |
–Allium cepa | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Delia spp. – Ditylenchus dipsaci – Meloidogyne spp. – przylżeńce, w szczególności Thrips tabaci |
bakterie: – Pseudomonas spp. | |
grzyby: – Botrytis spp. – Fusarium oxysporum f. sp. cepae – Peronospora destructor – Sclerotium cepivorum | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: wszystkie, w szczególności wirus żółtej karłowatości cebuli | |
–Allium futulosum | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Delia spp. – Ditylenchus dipsaci – przylżeńce, w szczególności Thrips tabaci |
grzyby: – Sclerotium cepivorum | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: wszystkie | |
–Allium porrum | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Delia spp. – Ditylenchus dipsaci – przylżeńce |
bakterie: – Pseudomonas spp. | |
grzyby: | |
– Alternaria porri – Fusarium culmorum – Phytophthora porri – Scelerotium cepivorutn | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: wszystkie, w szczególności wirus żółtej pasiastości czosnku | |
–Allium sativum | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Aceria tulipan – Delia spp. – Ditylenchus dipsaci – przylżeńce |
bakterie: – Pseudomonas fluorescens | |
grzyby: – Sclerotium cepivorum | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: wszystkie, w szczególności wirus żółtej karłowatości cebuli | |
–Apium graveolens | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Acidia Heraklei – Ligus spp. – Psila rosae – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis i Thrips tabaci |
bakterie: – Erwinia carotovora podp. carotovora – Pseudomonas syringae pv. apii | |
grzyby: – Fusarium oxysporum f. sp. apii – Phoma apiicolaythium spp. – Sclerotinia sclerotiorum – Septoria apiicola | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: wszystkie, w szczególności wirus mozaiki selera i wirus mozaiki ogórka | |
–Asparagus officinalis | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Brachyorynella asparagi – Hypopta caestrum |
– Platyparea poecyloptera | |
grzyby: – Fusarium spp. – Rhizoctonia violacea | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: wszystkie | |
–Beta vulgaris | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Pegomyia betae |
grzyby: – Photna betae | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: wszystkie, w szczególności wirus nekrotycznej żółtaczki nerwów buraka | |
–Brassica oleracea | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate – mszycowate – Heterodera spp. – łuskoskrzydłe, w szczególności Pieris brassicae – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
bakterie: – Pseudomonas syringae pv. maculicola – Xanthomonas campestris pv.campestris | |
grzyby: – Alternaria brassicae – Mycosphaerella spp. – Phoma lingam – Plasmodiophora brassicaeythium spp. – Rhizoctonia solani | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: wszystkie, w szczególności wirus mozaiki kalafiora, | |
–Brassica pekinensis | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mszycowate – łuskoskrzydłe, w szczególności Pieris brassicae |
bakterie: – Erwinia carotovora – Xanthomonas campestris pv. campestris | |
grzyby: – Alternaria brassicae – Botrytis cinerea – Mycosphaerella spp. – Phoma lingam – Plasmodiophora brassicae – Sclerotinia spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: wszystkie, w szczególności tospowirusy | |
–Capsicum annuum | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate – Leptinotarsa decemlineata – Ostrinia nubilalis – Phthorimaea operculella – przędziorki – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
grzyby: – Leveillula taurica – Pyrenochaeta lycopersici – Pythium spp. – Phytophthora capsici – Verticillium albo atrum – Verticillium dahliae | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: wszystkie, w szczególności wirus mozaiki ogórka, wirus mozaiki pomidora, wirus łagodnej pstrości papryki i wirus mozaiki tytoniu | |
–Cichorium endiva | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Aphididae – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
grzyby: – Botrytis cinerea – Erysiphe cichoriacearum – Sclerotinia spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: wszystkie, w szczególności wirus zachodniej żółtaczki buraka i wirus mozaiki sałaty | |
–Cichorium intybus | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: |
– mszycowate – Napomyza cichorii – Apion assimile | |
bakterie: – Erwinia carotovora – Erwinia chrysanthemi – Pseudomonas marginalis | |
grzyby: – Phoma exigua – Phytophthora erythroseptica – Pythium spp. – Sclerotinia sclerotiorum | |
–Citrullus lanatus | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate – mszycowate – Meloidogyne spp. – Polyphagotarsonemus latus – Tetranychus spp. – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
grzyby: – Colletotrichum lagenarium | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: wszystkie, w szczególności wirus mozaiki arbuza 2 | |
–Cucumis melo | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate – mszycowate – Meloidogyne spp. – Polyphagotarsonemus latus – Tetranychus spp. – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
bakterie: – Pseudomonas synringae pv. lachrymans | |
grzyby: – Colletotrichum lagenarium – Fusarium spp. – Pythium spp. | |
– Sphaerotheca fuliginea | |
– Verticillium spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: | |
wszystkie, w szczególności wirus zielonej cętkowatości ogórka, wirus mozaiki ogórka i wirus mozaiki dyni olbrzymiej | |
–Cucumis sativus | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: |
– mącznikowate | |
– mszycowate | |
– Delia platura | |
– Meloidogyne spp. | |
– Polyphagotarsonemus latus | |
– Tetranychus spp. | |
– przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis | |
bakterie: | |
– Pseudomonas syringae pv. lachrymans | |
grzyby: | |
– Fusarium spp. | |
– Phytophthora spp. | |
– Pseudoperonospora cubensis | |
– Pythium spp. | |
– Rhizoctonia spp. | |
– Sphaerotheca fuliginea | |
– Verticillium spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: | |
wszystkie | |
–Cucurbita maxima | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: |
– mącznikowate | |
– mszycowate | |
– Meloidogyne spp. | |
– Polyphagotarsonemus latus | |
– Tetranychus spp. | |
– przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: | |
wszystkie | |
–Cucrbita pepo | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: |
– mącznikowate | |
– mszycowate | |
– Meloidogyne spp. – Polyphagotarsonemus latus – Tetranychus spp. – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis | |
bakterie: – Pseudomonas syringae pv. lachrymans | |
grzyby: – Fusarium spp. – Sphaerotheca fuliginea – Verticillium spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: wszystkie, w szczególności wirus mozaiki ogórka, wirus mozaiki dyni olbrzymiej, wirus żółtej mozaiki cukinii i tospowirusy | |
–Cynara cardunculus i Cynara scolymus | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate – mszycowate – przylżeńce |
grzyby: – Bremia lactucae – Leveillula taurica f. sp. cynara – Pythium spp. – Rhizoctonia solani – Sclerotium rolfsii – Sclerotinia sclerotiorum – Verticillium dahliae | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: wszystkie | |
–Foeniculum vulgare | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate – mszycowate – przylżeńce |
bakterie: – Erwinia carotovora subsp. carotovora – Pseudomonas marginalis pv. marginalis | |
grzyby: – Cercospora foeniculi – Phytophthora syringae | |
– Sclerotinia spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: | |
wirus mozaiki selera | |
–Lectuca sativa | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: |
– mszycowate | |
– Meloidogyne spp. | |
– przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis | |
grzyby: | |
– Botrytis cinerea | |
– Bremia lactucae | |
– Pythium spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: | |
wszystkie, w szczególności wirus pogrubienia nerwów sałaty, wirus mozaiki sałaty i pierścieniowa nekroza sałaty | |
–Lycopersicon lycopersicum | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: |
– mszycowate | |
– mącznikowate | |
– Hauptidia maroccana | |
– Meloidogyne spp. | |
– Tetranychus spp. | |
– przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis | |
– Vasates lycopersici | |
bakterie: | |
– Pseudomonas syringae pv. tomato | |
grzyby: | |
– Alternaria solani | |
– Cladosporium fulvum | |
– Colletotrichum coccoides | |
– Didymella lycopersici | |
– Fusarium oxysporum | |
– Leveillula taurica | |
– Phytophthora nicotianae | |
– Pyrenochaeta lycopersici | |
– Pythium spp. | |
– Rhizoctonia solani | |
– Sclerotinia sclerotiorum | |
– Verticillium spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: | |
wszystkie, w szczególności wirus mozaiki ogórka, wirus X ziemniaka, wirus Y ziemniaka, mozaika zwykła tytoniu, wirus mozaiki pomidora i wirus żółtej kędzierzawki liści pomidora | |
–Rheum spp. | bakterie: |
– Agrobacterium tumefaciens | |
– Erwinia rhapontici | |
grzyby: | |
– Armillariella mellea | |
– Verticillium spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: | |
wszystkie, w szczególności wirus mozaiki gęsiówki i wirus mozaiki rzepy | |
–Solanum melongena | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: |
– mącznikowate | |
– mszycowate | |
– Hemitarsonemus latus | |
– Leptinotarsa decemlineata | |
– Meloidogyne spp. | |
– Tetranychidae | |
– przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis | |
grzyby: | |
– Fusarium spp. | |
– Leveillula tauricaf. sp. cynara | |
– Rhizoctonia solani | |
– Pythium spp. | |
– Sclerotinia sclerotiorum | |
– Verticillium spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: | |
wszystkie, w szczególności wirus mozaiki ogórka, wirus mozaiki bakłażana, wirus ziemniaka Y i wirus mozaiki tytoniu |
3. Wymagania dodatkowe dotyczące wytwarzania i jakości materiału nasadzeniowego cebuli (dymki), szalotki i czosnku:
1) materiału nasadzeniowego cebuli, szalotki i czosnku nie wytwarza się na polu, na którym w okresie ostatnich czterech lat były uprawiane rośliny cebulowe;
2) odległość plantacji cebuli, szalotki i czosnku od innych upraw gatunków cebulowych powinna być nie mniejsza niż 50 m; odległość ta może być zmniejszona do nie mniej niż 2 m, w przypadku gdy sąsiadująca plantacja jest odpowiednio plantacją cebuli, szalotki lub plantacją czosnku, spełniającą wymagania dotyczące wytwarzania;
3) na powierzchni 10 m2 nie może występować więcej niż 0,5 rośliny innych odmian;
4) materiał nasadzeniowy cebuli, szalotki i czosnku pochodzi bezpośrednio z materiału, który w fazie uprawy był poddany ocenie i określony jako praktycznie wolny od jakichkolwiek organizmów szkodliwych i chorób, ich oznak lub objawów, w szczególności wymienionych w pkt 5;
5) ocena cech zewnętrznych partii cebuli dymki, szalotki i czosnku wytworzonych na terytorium Rzeczypospolitej Polskiej:
Lp. | Wyszczególnienie | Nie więcej niż (% wagowy) |
| I. Czosnek | |
1 | Cebulki nietypowe dla odmiany | 1,0 |
2 | Cebulki o masie mniejszej niż 30 g i średnicy mniejszej niż 3 cm oraz cebulki o masie mniejszej niż 6 g dla odmian zimowych | 3,0 |
3 | Cebulki o masie mniejszej niż 20 g i średnicy mniejszej niż 2 cm oraz cebulki o masie mniejszej niż 4 g dla odmian letnich | 5,0 |
4 | Cebulki zniekształcone, chore, z uszkodzeniami mechanicznymi lub o silnie spękanej łusce | 1,0 |
| II. Cebula i szalotka | |
1 | Cebulki porażone Penicillium i innymi chorobami jakościowymi | 1,0 |
2 | Cebulki z objawami występowania Sclerotium cepivorum | 0,0 |
3 | Cebulki nietypowe dla odmiany | 1,0 |
4 | Cebulki uszkodzone | 0,5 |
5 | Cebulki pozbawione łuski | 2,0 |
6 | Cebulki skiełkowane | 3,0 |
7 | Cebulki z zaschniętym szczypiorem dłuższym niż 2 cm | 3,0 |
8 | Cebulki z zaschniętymi korzeniami dłuższymi niż 4 cm | 3,0 |
9 | Cebulki o niewłaściwej wielkości | 3,0 |
10 | Ziemia i inne zanieczyszczenia | 0,5 |
| Łącznie wady wymienione w lp. 1–9 | 5,0 |
6) sortowanie cebuli:
a) wytworzona na terytorium Rzeczypospolitej Polskiej partia cebuli przed wprowadzeniem do obrotu powinna być posortowana na frakcje o wielkości:
Frakcja | Średnica cebulek (w mm) |
I | 5–10 |
II | powyżej 10–15 |
III | powyżej 15–20 |
IV | powyżej 20–25 |
b) w jednym opakowaniu może znajdować się tylko jedna frakcja,
c) na opakowaniu umieszcza się informację dotyczącą wielkości cebulek, z podaniem numeru frakcji oraz średnicy cebulek.
Załącznik nr 3
SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA I JAKOŚCI MATERIAŁU ROZMNOŻENIOWEGO I NASADZENIOWEGO ROŚLIN OZDOBNYCH
1. Materiał rozmnożeniowy i nasadzeniowy roślin ozdobnych powinien mieć odpowiednią tożsamość, czystość rodzajową, gatunkową lub odmianową, za które odpowiada dostawca.
2. Materiał rozmnożeniowy i nasadzeniowy roślin ozdobnych powinien być wolny od organizmów kwarantannowych.
3. Materiał rozmnożeniowy i nasadzeniowy roślin ozdobnych powinien być praktycznie wolny od:
1) szkodników, chorób grzybowych, bakteryjnych oraz wirusowych i wirusopodobnych;
2) objawów występowania tych organizmów;
3) wad obniżających jego jakość.
4. Materiał rozmnożeniowy i nasadzeniowy roślin ozdobnych powinien:
1) charakteryzować się odpowiednią użytecznością i żywotnością;
2) mieć właściwe rozmiary;
3) być w odpowiedniej fazie rozwoju w odniesieniu do jego przydatności jako materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego;
4) zachowywać odpowiednie proporcje między korzeniami, łodygami i liśćmi.
5. Jeżeli materiałem rozmnożeniowym są nasiona, powinny one wykazywać odpowiednią dla gatunku zdolność kiełkowania.
6. Wykaz organizmów szkodliwych na gatunkach roślin ozdobnych, których materiał rozmnożeniowy i nasadzeniowy podlega ocenie cech zewnętrznych:
Rodzaj lub gatunek | Szczególne organizmy szkodliwe i choroby |
–Begonia x hiemalis Fotsch | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate, w szczególności Bemisia tabaci – Aphelenchoides spp. – Ditylenchus destructor – Meloidogyne spp. – Myzus ornatus – Otiorrhynchus sulcatus – Sciara – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
bakterie: – Erwinia chrysanthemi – Rhodococcus fascians | |
– Xanthomonas campestri spv. begoniae | |
grzyby: | |
– mączniak właściwy | |
– patogeny zgnilizny łodyg (Phytophthora spp., Pythium spp. i Rhizoctonia spp.) | |
wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: | |
– kędzierzawka liści | |
– tospowirusy (wirus brązowej plamistości pomidora, wirus plamistości nekrotycznej niecierpka) | |
–Cytrusy | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: |
– Aleurothrixus floccosus (Mashell) | |
– Meloidogyne spp. | |
– Parabemisia myricae (Kuwana) | |
– Tylenchulus semipenetrans | |
grzyby: | |
– Phytophthora spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: | |
– wiroidy takie, jak: exocortis, cachexia-xyloporosis | |
– choroby wywołujące psorosis – jak objawy młodych liści takie jak: psorosis, ring spot, cristacortis, impietratura, concave gum | |
– różnobarwność zakaźna | |
– wirus szorstkości liści cytrusowych | |
–Dendranthema x Grandiflorum (Ramat) Kitam | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: |
– miniarkowate | |
– mącznikowate, w szczególności Bemisia tabaci, Aphelencoides spp. i Diarthronomia chrysanthemi | |
– łuskoskrzydłe, w szczególności Cacoecimorpha | |
– przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis | |
bakterie: | |
– Agrobacterium tumefaciens | |
– Erwinia chrysanthemi | |
grzyby: | |
– Fusarium oxisporum spp. chrysanthemi | |
– Puccinia chrysanthemi | |
– Pythium spp. | |
– Rhizoctonia solani | |
– Verticillium spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: | |
– wirus mozaiki B chryzantemy | |
– tomato aspermy cucumovirus | |
–Dianthus Caryophyllus L.i hybryda | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: |
– miniarkowate | |
– mącznikowate, w szczególności Bemisia tabaci | |
– przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis | |
– łuskoskrzydłe, w szczególności Cacoecimorpha pronubana, Epichoristodes acerbella | |
grzyby: | |
– Alternaria dianthi | |
– Alternaria dianthicola | |
– Fusarium oxisporumf. spp. dianthi | |
– Mycosphaerella dianthi | |
– Phytophthora nicotiana spp. parasitica | |
– Rhizoctonia solani | |
– zgnilizna łodyg Fusarium spp. i Pythium spp. | |
– Uromyces dianthi | |
wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: | |
– wirus wżerkowej pierścieniowej plamistości goździka | |
– wirus pstrości goździka | |
– wirus drobnej nekrotycznej plamistości goździka | |
– tospowirusy (wirus brązowej plamistości pomidora, wirus plamistości nekrotycznej niecierpka) | |
–Euforbia pulcherrima (Wild ex Kletzch) | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: |
– mącznikowate, w szczególności Bemisia tabaci | |
bakterie: | |
– Erwinia chrysanthemi | |
grzyby: | |
– Fusarium spp. | |
– Pythium ultimum | |
– Pytophthora spp. | |
– Rhizoctonia solani | |
– Thielaviopsis basicola | |
wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: | |
tospowirusy (wirus brązowej plamistości pomidora, wirus plamistości nekrotycznej niecierpka) | |
–Gerbera L. | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: |
– miniarkowate | |
– mącznikowate, w szczególności Bemisia tabaci | |
– Aphelencoides spp. | |
– Lapidoptera | |
– Meloidogyne | |
– przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis | |
grzyby: | |
– Fusarium spp. | |
– Phytophthora cryptogea | |
– mączniak | |
– Rhizoctonia solani | |
– Verticillium spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: | |
tospowirusy (wirus brązowej plamistości pomidora, wirus plamistości nekrotycznej niecierpka) | |
–Gladiolus L. | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: |
– Ditylenchus dipsaci | |
– przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis | |
bakterie: | |
– Pseudomonas marginata | |
– Rhodococcus fascians | |
grzyby: | |
– Botrytis gladiolorum | |
– Curvularia trifolii | |
– Fusarium oxisporum spp. gladioli | |
– Pénicillium gladioli | |
– Sclerotinia spp. | |
– Septoria gladioli | |
– Urocystis gladiolicola | |
– Uromyces trasversalis | |
wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: | |
– fitoplazmowa żółtaczka astra | |
– czynnik korkowatości rdzenia łodygi | |
– wirus mozaiki ogórka | |
– wirus pierścieniowej plamistości mieczyka (syn. utajony wirus narcyza białego) | |
– wirus nekrotycznej kędzierzawki tytoniu | |
inne organizmy szkodliwe: | |
– Cyperus esculentus | |
–Lilium L. | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: |
– Aphelenchoides spp. | |
– Rhysoglyphus spp. | |
– Pratylenchus penetrans | |
– Rotylenchus robustus | |
– przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis | |
bakterie: | |
– Envinia carotovora podg. carotovora | |
– Rhodococcus fascians | |
grzyby: | |
– Cylindrocarpon destructans | |
– Fusarium oxisporum f. sp. lilii | |
– Pythium spp. | |
– Rhizoctonia spp. | |
– Rhizopus spp. | |
– Sclerotium spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: | |
– wirus mozaiki ogórka | |
– wirus bezobjawowy lilii | |
– wirus X lilii | |
– wirus nekrotycznej kędzierzawki tytoniu | |
– wirus pstrości tulipana | |
inne organizmy szkodliwe | |
– Cyperus esculentus | |
–Malus Miller | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: |
– Anarsia lineatella | |
– Eriosoma lanigerum | |
– czerwce, w szczególności Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona i Quadraspidiotus perniciosus | |
bakterie: | |
– Agrobacterium tumefaciens | |
– Pseudomonas syringae pv. syringae | |
grzyby: | |
– Armillariella mellea | |
– Chondrostereum purpureum | |
– Nectria galligena | |
– Phytophtora cactorum | |
– Rosellinia necatrix | |
– Venturia spp. | |
– Verticillium spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: | |
wszystkie | |
–Narcissus L. | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: |
– Aphelenchoides subtenuis | |
– Ditylenchus destructor | |
– Eumerus spp. | |
– Merodon equestris | |
– Pratylenchus penetrant | |
– rozkruszkowate | |
– trójpazurkowce | |
grzyby: | |
– Fusarium oxysporum f. sp. narcissi | |
– Sclerotinia spp. | |
– Sclerotium bulborum | |
wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: | |
– wirus nekrotycznej kędzierzawki tytoniu | |
– czynnik srebrzystej smugowatości narcyza | |
– wirus żółtej pasiastości narcyza | |
inne organizmy szkodliwe | |
– Cyperus esculentus | |
–- Pelargonium L. | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: |
– mącznikowate, w szczególności Bemisia tabaci | |
– łuskoskrzydłe | |
– przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis | |
bakterie: | |
– Rhodococcus fascians | |
– Xanthomonas campestris pv. pelargonii | |
grzyby: | |
– Puccinia pelargonii zonalis | |
– patogeny zgnilizny łodyg (Botrytis spp., Pythium spp.) – Verticillium spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: – wirus pstrokatości pelargonii – wirus kędzierzawki pelargonii – wirus wstęgowej mozaiki pelargonii – tospowirusy (wirus brązowej plamistości pomidora, wirus plamistości nekrotycznej niecierpka) | |
–Phoenix | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – przylżeńce |
grzyby: – Exosporium palmivorum – Gliocladium wermoeseni – Graphiola phoenicis – Pestalozzia Phoenicis – Pythium spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: wszystkie | |
–Pinus nigra | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Blastophaga spp. – Rhyacionia buoliana |
grzyby: – Ophodermium seditiosum | |
wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: wszystkie | |
–Prunus L. | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Capnodis tenebrionis – Meloidogyne spp. – czerwce, w szczególności Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona i Quadraspidiotus perniciosus |
bakterie: – Agrobacterium tumefaciens – Pseudomonas syringae pv. mors prunorum – Pseudomonas syringae pv. syringae | |
grzyby: – Armillariella mellea – Chondrostereum purpureum – Nectria galligena – Rosellinia necatrix – Taphrina deformans – Verticillium spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: – wirus karłowatości śliwy – wirus nekrotycznej pierścieniowej plamistości śliwy | |
–Pyrus L. | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Anarsia lineatella – Eriosoma lanigerum – czerwce, w szczególności Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona i Quadraspidiotus perniciosus |
bakterie: – Agrobacterium tumefaciens – Pseudomonas syringae pv. syringae | |
grzyby: – Armillariella mellea – Chondrostereum purpureum – Nectria galligena – Phytophthora spp. – Rosellinia necatrix – Verticilliun spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne: wszystkie | |
–Rosa | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – łuskoskrzydłe, w szczególności Epichoristodes acerbella, Cacoecimorpha pronubana – Meloidogyne spp. – Pratylenchus spp. – Tetranychus urticae |
bakterie: – Agrobacterium tumefaciens | |
grzyby: – Chondrostereum purpureum | |
– Choristoneura spp. | |
– Diplocarpon rosae | |
– Peronospora sparsa | |
– Phragmidium spp. | |
– Rosellinia necatrix | |
– Sphaeroteca pannosa | |
– Verticillium spp. | |
wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: | |
– wirus mozaiki jabłka | |
– wirus mozaiki gęsiówki | |
– wirus nekrotycznej pierścieniowej plamistości śliwy |
Załącznik nr 4
SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA I JAKOŚCI MATERIAŁU SIEWNEGO KATEGORII ELITARNY LUB KATEGORII KWALIFIKOWANY ROŚLIN SADOWNICZYCH ORAZ MATERIAŁU SZKÓŁKARSKIEGO CAC
A. Wytwarzanie materiału siewnego kategorii elitarny i kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych
I. Wymagania ogólne
1. Za materiał siewny kategorii elitarny roślin sadowniczych uważa się materiał, do którego wytwarzania użyto składników kategorii elitarny.
2. Za materiał siewny kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych uznaje się materiał, do którego wytwarzania użyto składników kategorii kwalifikowany lub kategorii elitarny.
3. Za materiał siewny kategorii elitarny lub kwalifikowany roślin sadowniczych wolny od wirusów uznaje się materiał, do którego wytwarzania użyto składników wolnych od wirusów.
4. Plantacje materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany z rodzaju Prunus, Rubus i Fragaria zakłada się na gruntach lub w podłożach uznanych za wolne od nicieni z rodzaju Longidorus spp. i Xiphinema spp., będących wektorami wirusów.
II. Wymagania dla materiału siewnego kategorii przedbazowy
Rośliny materiału siewnego kategorii przedbazowy roślin sadowniczych powinny pochodzić z tożsamych odmianowo roślin kandydackich. Rośliny powinny rosnąć w pojemnikach bez kontaktu korzeni z glebą lub w odkażonym podłożu w osiatkowanych pomieszczeniach (karkasach). Rośliny powinny być przetestowane w celu stwierdzenia, czy są wolne od organizmów wymienionych w niniejszym załączniku. Testowanie powtarza się okresowo w celu sprawdzenia zdrowotności roślin. Do testowania stosuje się metodyki testów rekomendowane przez Europejską Śródziemnomorską Organizację Ochrony Roślin (EPPO) albo inne metodyki uznane międzynarodowo, a w przypadku ich braku – metodyki przyjęte na poziomie krajowym.
III. Plantacje podkładek wegetatywnych drzew owocowych
1. Izolacja przestrzenna:
1) mateczniki podkładek gatunków roślin, które są porażane przez wirus ospowatości śliwy (Plum pox virus), powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 250 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych tych gatunków;
2) mateczniki podkładek gatunków roślin, które nie są porażane przez wirus ospowatości śliwy, powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 10 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych tych gatunków;
3) mateczniki wolne od wirusów powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 3 m od innych mateczników;
4) podkładki różnych odmian powinny być wysadzone w oddzielnych rzędach; dotyczy to także podkładek tych samych odmian wysadzonych w różnych latach.
2. Czystość gatunkowa i odmianowa Dla plantacji matecznych jest wymagana całkowita czystość gatunkowa i odmianowa.
3. Wiek1):
1) mateczniki elitarne drzew ziarnkowych utrzymuje się do 11 lat, a drzew pestkowych do 9 lat;
2) mateczniki kwalifikowane drzew ziarnkowych utrzymuje się do 18 lat, a drzew pestkowych do 15 lat;
3) podkładki wegetatywne nie mogą być starsze niż dwuletnie.
4. Rozmnażanie Materiał do założenia plantacji pozyskuje się z roślin otrzymanych z mikrorozmnażania, sadzonkowania albo z odkładów. Do założenia matecznika podkładek drzew ziarnkowych stosuje się podkładki nie starsze niż dwuletnie. Do zakładania mateczników podkładek drzew pestkowych używa się podkładek jednorocznych.
5. Zdrowotność:
1) podkładki wegetatywne drzew owocowych powinny być:
a) wolne od organizmów kwarantannowych,
b) praktycznie wolne od organizmów, które mogą obniżyć ich jakość, a w szczególności od organizmów wymienionych w części C w dziale II – na podstawie wizualnej oceny;
2) podkładki wolne od organizmów wymienionych w dziale VIII uważa się za wolne od chorób wirusowych i wirusopodobnych.
6. Wymagania dodatkowe Plantację zgłasza się do jednej oceny rocznie, wykonywanej pod koniec lata albo na początku jesieni, przed zakończeniem wegetacji roślin. W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.
Każda odmiana podkładki powinna być oznaczona etykietami na początku rzędu lub kwatery.
1) plantacji – liczona od roku założenia (posadzenia) plantacji;
2) drzewek – liczona od roku szczepienia (okulizacji) podkładki zrazem (oczkiem) odmiany, wstawki skarlającej, pośredniej lub przewodniej;
3) drzewek własnokorzeniowych – liczona jest od roku ukazania się u nasady pędu korzeni przybyszowych;
4) podkładek:
a) generatywnych – liczona od roku skiełkowania nasion,
b) wegetatywnych – liczona od roku ukazania się części nadziemnej podkładki i korzeni przybyszowych,
c) z kultur in vitro – liczona od roku wysadzenia ukorzenionych roślin pod osłony lub na pole;
5) roślin w formie krzaczastej – liczona od roku posadzenia sadzonek pod osłonami lub na polu;
6) roślin w formie piennej – liczona od rozpoczęcia wzrostu pędów z przyjętych zrazów lub oczek odmiany.
IV. Plantacje podkładek generatywnych drzew owocowych
1. Izolacja przestrzenna:
1) podkładki generatywne gatunków roślin, które są porażane przez wirus ospowatości śliwy, powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 250 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych tych gatunków;
2) podkładki generatywne gatunków roślin, które nie są porażane przez wirus ospowatości śliwy, powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 10 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych tych gatunków;
3) podkładki generatywne wolne od wirusów powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 2 m od innych podkładek;
4) podkładki generatywne różnych gatunków i odmian powinny rosnąć w oddzielnych rzędach lub kwaterach.
2. Czystość gatunkowa i odmianowa
Na plantacjach podkładek generatywnych jest wymagana całkowita czystość gatunkowa i odmianowa.
3. Rozmnażanie
Nasiona do uzyskania podkładek generatywnych pobiera się z elitarnych lub kwalifikowanych sadów nasiennych.
4. Wiek
Podkładki generatywne nie mogą być starsze niż dwuletnie.
5. Zdrowotność:
1) podkładki generatywne powinny być:
a) wolne od organizmów kwarantannowych,
b) praktycznie wolne od organizmów, które mogą obniżyć ich jakość, a w szczególności od organizmów wymienionych w części C w dziale II – na podstawie wizualnej oceny;
2) choroby wirusowe i wirusopodobne:
a) podkładki generatywne drzew pestkowych wolne od organizmów wymienionych w dziale VIII uważa się za wolne od chorób wirusowych i wirusopodobnych,
b) podkładki generatywne jabłoni i gruszy uznaje się za wolne od chorób wirusowych i wirusopodobnych.
6. Wymagania dodatkowe
Plantację zgłasza się do jednej oceny rocznie, wykonywanej pod koniec lata lub na początku jesieni, przed zakończeniem wegetacji roślin albo wiosną, a w przypadku pikówek – na początku lata.
W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.
Każdy gatunek i każda odmiana podkładki powinny być oznaczone etykietami na początku rzędu lub kwatery.
V. Sady do pozyskiwania nasion
1. Izolacja przestrzenna:
1) sady drzew pestkowych powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 250 m od dziko rosnących lub uprawnych drzew i krzewów pestkowych tych samych rodzajów;
2) sady drzew ziarnkowych powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 50 m od dziko rosnących lub uprawnych drzew i krzewów ziarnkowych tych samych rodzajów;
3) sady drzew ziarnkowych wolnych od wirusów powinny być wysadzane w oddzielnych kwaterach, a sady drzew pestkowych wolnych od wirusów – w oddzielnych kwaterach, z zachowaniem odległości 500 m albo 250 m od dziko rosnących lub uprawnych drzew i krzewów ziarnkowych albo pestkowych tych samych rodzajów.
2. Czystość gatunkowa i odmianowa:
1) wymagana jest całkowita czystość gatunkowa i odmianowa;
2) drzewa odmian zapylających oznacza się trwale.
3. Rozmnażanie Sady nasienne zakłada się z drzewek elitarnych przeznaczonych dla sadów nasiennych. Drzewa odmian zapylających powinny mieć identyczną zdrowotność jak drzewa do pozyskiwania nasion.
4. Wiek Nie określa się wymagań dotyczących wieku sadu.
5. Zdrowotność:
1) drzewa nasienne i nasiona do produkcji podkładek generatywnych powinny być:
a) wolne od organizmów kwarantannowych,
b) praktycznie wolne od organizmów, które mogą obniżyć jakość materiału szkółkarskiego, a w szczególności od organizmów wymienionych w części C w dziale II – na podstawie wizualnej oceny;
2) choroby wirusowe i wirusopodobne:
a) drzewa nasienne i nasiona wolne od organizmów wymienionych w dziale VIII uważa się za wolne od chorób wirusowych i wirusopodobnych,
b) sady nasienne drzew pestkowych wolnych od wirusów, dla których jest zachowana odległość 500 m (izolacja przestrzenna), powinny być co sześć lat badane na choroby wirusowe niekwarantannowe, przenoszone przez pyłek i inne wektory; pierwsze testowanie wykonuje się na trzyletnich drzewkach,
c) sady nasienne drzew pestkowych wolnych od wirusów, dla których jest zachowana odległość 250 m (izolacja przestrzenna), powinny być co cztery lata badane na choroby wirusowe niekwarantannowe, przenoszone przez pyłek i inne wektory; pierwsze badanie wykonuje się na trzyletnich drzewkach,
d) w przypadku wykrycia wirusów podczas badań okresowych chore drzewa powinny być usunięte i badanie powinno być powtórzone w następnym roku, aż do uzyskania negatywnych wyników dla całego sadu; po tym okresie badania wykonuje się w sposób określony w lit. b albo c.
6. Wymagania dodatkowe
Plantację zgłasza się do jednej oceny rocznie: drzewa ziarnkowe – w okresie dojrzewania owoców, a drzewa pestkowe – przed zbiorem owoców.
W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.
Każdy gatunek i każda odmiana powinny być oznaczone etykietami na początku rzędu lub kwatery.
VI. Sady do pozyskiwania zrazów lub oczek
1. Izolacja przestrzenna:
1) sady zraźnikowe gatunków roślin, które są porażane przez wirus ospowatości śliwy, powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 250 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych tych gatunków;
2) sady zraźnikowe gatunków roślin, które nie są porażane przez wirus ospowatości śliwy, powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 50 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych tych gatunków;
3) w sadzie zraźnikowym różne odmiany tego samego gatunku powinny być wysadzone w:
a) oddzielnych rzędach lub w jednym rzędzie,
b) odległości 2 m od siebie, trwale oznaczone;
4) sady zraźnikowe wolne od wirusów powinny być wysadzone w oddzielnych kwaterach z zachowaniem odległości 3 m.
2. Czystość gatunkowa i odmianowa
Wymagana jest całkowita czystość gatunkowa i odmianowa.
3. Rozmnażanie
Sady do pozyskiwania zrazów lub oczek są zakładane z drzewek elitarnych przeznaczonych dla sadów zraźnikowych.
4. Wiek:
1) elitarne sady zraźnikowe drzew pestkowych utrzymuje się do 9 lat, a drzew ziarnkowych do 11 lat;
2) kwalifikowane sady zraźnikowe drzew pestkowych utrzymuje się do 11 lat, a drzew ziarnkowych do 13 lat;
3) drzewa zraźnikowe, z wyjątkiem drzew pestkowych, mogą owocować.
5. Zdrowotność:
1) drzewa zraźnikowe i zrazy (oczka) powinny być:
a) wolne od organizmów kwarantannowych,
b) praktycznie wolne od organizmów, które mogą obniżyć ich jakość, a w szczególności od organizmów wymienionych w części C w dziale II – na podstawie wizualnej oceny;
2) choroby wirusowe i wirusopodobne: drzewa zraźnikowe i zrazy lub oczka wolne od organizmów wymienionych w dziale VIII uważa się za wolne od chorób wirusowych i wirusopodobnych.
6. Wymagania dodatkowe
Plantację zgłasza się do jednej oceny rocznie, przeprowadzanej w czerwcu lub lipcu, bezpośrednio przed pozyskiwaniem zrazów lub oczek.
W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.
Każdy gatunek i każda odmiana powinny być oznaczone etykietą na początku rzędu lub kwatery.
VII. Szkółki drzewek i plantacje uszlachetnionych podkładek
1. Izolacja przestrzenna:
1) szkółki drzewek i plantacje uszlachetnionych podkładek gatunków roślin, które są porażane przez wirus ospowatości śliwy, powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 250 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych tych gatunków;
2) szkółki drzewek i plantacje uszlachetnionych podkładek gatunków roślin, które nie są porażane przez wirus ospowatości śliwy, powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 10 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych tych gatunków;
3) szkółki drzewek i plantacje uszlachetnionych podkładek wolnych od wirusów powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 2 m od innych drzewek i plantacji uszlachetnionych podkładek.
2. Czystość gatunkowa i odmianowa W szkółkach i na plantacjach uszlachetnionych podkładek jest wymagana całkowita czystość gatunkowa i odmianowa.
Zastosowanie do uszlachetniania drzewek niewłaściwych podkładek, wstawek przewodnich i pośrednich, powodujących objawy niezgodności dyskwalifikuje drzewka odmian z objawami niezgodności (żółknięcie i opadanie liści oraz wyraźne przebarwienie kory).
3. Rozmnażanie Szkółki zakłada się z materiału siewnego kategorii elitarny albo kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych przeznaczonych dla szkółek.
4. Wiek:
1) drzewka elitarne nie mogą być starsze niż dwuletnie, jeżeli nie owocowały;
2) drzewka kwalifikowane nie mogą być starsze niż czteroletnie.
5. Zdrowotność:
1) drzewka albo uszlachetnione podkładki powinny być:
a) wolne od organizmów kwarantannowych,
b) praktycznie wolne od organizmów, które mogą obniżyć ich jakość, a w szczególności od organizmów wymienionych w części C w dziale II – na podstawie wizualnej oceny;
2) choroby wirusowe i wirusopodobne: drzewka wolne od organizmów wymienionych w dziale VIII uważa się za wolne od chorób wirusowych i wirusopodobnych.
6. Wymagania dodatkowe
Plantację zgłasza się do jednej oceny rocznie, wykonywanej pod koniec lata albo na początku jesieni, przed zakończeniem wegetacji roślin albo przed sprzedażą roślin utrzymywanych w pojemnikach.
W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.
Każdy gatunek i każda odmiana powinny być oznaczone etykietami na początku rzędu lub kwatery.
VIII. Zdrowotność materiału siewnego roślin sadowniczych
Wykaz wirusów i fitoplazm oraz chorób wirusowych i wirusopodobnych dla materiału siewnego roślin sadowniczych o statusie zdrowotności „wolne od wirusów”.2)
Materiał ten oznacza się „ww” – wolne od wirusów albo „vf” – virus free. Materiał ten powinien być wolny od wszystkich wirusów i patogenów wirusopodobnych, a zwłaszcza:
1) jabłoń od:
a) wirusa chlorotycznej plamistości liści jabłoni (Apple chlorotic leaf spot virus),
b) wirusa mozaiki jabłoni (Apple mosaic virus),
c) wirusa żłobkowatości pnia jabłoni (Apple stem grooving virus),
d) wirusa jamkowatości pnia jabłoni (Apple stem pitting virus) wywołującego epinastię i zamieranie kory „Spy” (Spay epinasty and decline),
e) fitoplazmy proliferacji jabłoni (Apple proliferation phytoplasma),
f) drobnienia owoców jabłoni (Apple chat fruit),
g) zielonej marszczycy jabłek (Apple green crinkle),
h) podkówkowatego spękania jabłoni (Apple horseshoe wound),
i) szorstkości skórki jabłek (Apple rough skin),
j) gwiaździstego spękania jabłek (Apple star crack),
k) plamistości pierścieniowej jabłek (Apple ring spot),
l) pierścieniowego ordzawienia jabłek (Apple russet ring),
m) gumowatości drewna jabłoni (Apple rubbery wood),
n) spłaszczenia konarów jabłoni (Apple flat limb),
o) rdzawej brodawkowatości jabłek (Apple russet wart),
p) epinastii i zamierania kory jabłoni (Spy epinasty and decline),
q) łuszczenia się kory Malus platycarpa (Platycarpa scaly bark);
2) grusza i pigwa od:
a) wirusa chlorotycznej plamistości liści jabłoni (Apple chlorotic leaf spot virus),
b) wirusa jamkowatości pnia jabłoni (Apple stem pitting virus – Pear vein yellows virus),
c) fitoplazmy zamierania gruszy (Pear decline phytoplasma),
d) wiroida pęcherzowatych zrakowaceń gruszy (Pear blister canker viroid),
e) spękania kory (Pear bark split),
f) nekrozy kory (Pear bark necrosis),
g) szorstkości kory (Pear rough bark),
h) sadzowatej pierścieniowej plamistości pigwy (Quince sooty ringspot),
i) gumowatości drewna (Apple rubbery wood), j) żółtej plamistości pigwy (Quince yellow blotch),
k) kamienistości miąższu gruszek (Pear stony pit);
3) wiśnia i czereśnia od:
a) wirusa chlorotycznej plamistości liści jabłoni (Apple chlorotic leaf spot virus),
b) wirusa mozaiki jabłoni (Apple mosaic virus),
c) wirusa mozaiki gęsiówki (Arabic mosaic virus),
d) wirusa zielonej pierścieniowej pstrości czereśni (Cherry green ring mottle virus),
e) wirusa liściozwoju czereśni (Cherry leaf roll virus),
f) wirusa drobnienia czereśni 1 i 2 (Little cherry virus 1, Little cherry virus 2),
g) wirusa karłowatości śliwy – żółtaczki wiśni (Prune dwarf virus),
h) wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni (Prunus necrotic ringspot virus),
i) wirusa cętkowanej plamistości liści czereśni (Cherry mottle leaf virus),
j) wirusa pierścieniowej plamistości maliny (Raspberry ringspot virus),
k) utajonego wirusa pierścieniowej plamistości truskawki (Strawberry latent ringspot virus),
l) wirusa czarnej pierścieniowej plamistości pomidora (Tomato black ring virus),
m) fitoplazmy europejskiej żółtaczki drzew pestkowych (European stone fruit yellows phytoplasma),
n) rdzawej pstrości czereśni (Cherry rusty mottle),
o) nekrotyczno-rdzawej plamistości czereśni (Cherry necrotic rusty mottle),
p) Detrimental canker,
q) Shirofugen stunt;
4) śliwa od:
a) wirusa chlorotycznej plamistości liści jabłoni (Apple chlorotic leaf spot virus),
b) wirusa mozaiki jabłoni (Apple mosaic virus),
c) utajonego wirusa pierścieniowej plamistości mirabelki (Myrobalan latent ringspot virus),
d) wirusa ospowatości śliwy (Plum pox virus),
e) wirusa karłowatości śliwy – żółtaczki wiśni (Prune dwarf virus),
f) wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni (Prunus necrotic ringspot virus),
g) fitoplazmy europejskiej żółtaczki drzew pestkowych (European stone fruit yellows phytoplasma);
5) brzoskwinia od:
a) wirusa chlorotycznej plamistości liści jabłoni (Apple chlorotic leaf spot virus),
b) wirusa mozaiki jabłoni (Apple mosaic virus),
c) wirusa zielonej pierścieniowej pstrości czereśni (Cherry green ring mottle virus),
d) wirusa ospowatości śliwy (Plum pox virus),
e) wirusa karłowatości śliwy – żółtaczki wiśni (Prune dwarf virus),
f) wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni (Prunus necrotic ringspot virus),
g) utajonego wirusa pierścieniowej plamistości truskawki (Strawberry latent ringspot virus),
h) wirusa czarnej pierścieniowej plamistości pomidora (Tomato black ring virus),
i) fitoplazmy europejskiej żółtaczki drzew pestkowych (European stone fruit yellows phytoplasma),
j) utajonego wiroida mozaiki brzoskwini (Peach latent mosaic viroid),
k) gwiaździstej plamistości brzoskwini (Peach asteroid spot);
6) morela od:
a) wirusa chlorotycznej plamistości liści jabłoni (Apple chlorotic leaf spot virus),
b) wirusa mozaiki jabłoni (Apple mosaic virus),
c) wirusa ospowatości śliwy (Plum pox virus),
d) wirusa karłowatości śliwy – żółtaczki wiśni (Prune dwarf virus),
e) wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni (Prunus necrotic ringspot virus),
f) fitoplazmy europejskiej żółtaczki drzew pestkowych (European stone fruit yellows phytoplasma),
g) gwiaździstej plamistości brzoskwini (Peach asteroid spot).
IX. Plantacje mateczne i szkółki sadzonek truskawki
1. Rozmnażanie
Dla truskawki stosuje się cztery stopnie kwalifikacji:
1) superelita (SE) – materiał przedbazowy;
2) elita 1 (E1) – materiał bazowy;
3) elita 2 (E2) – materiał bazowy;
4) oryginał (O) – materiał kwalifikowany.
2. Izolacja przestrzenna
Elitarne plantacje i szkółki sadzonek powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 200 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych z rodzaju Fragaria spp., a plantacje i szkółki kwalifikowane – w odległości nie mniejszej niż 50 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych z rodzaju Fragaria spp. Odstępy między odmianami, stopniami kwalifikacji lub kategoriami nie powinny być mniejsze niż 3 m.
3. Czystość gatunkowa i odmianowa
Wymagana jest całkowita czystość gatunkowa i odmianowa.
4. Wiek
Plantacje truskawki mogą być prowadzone przez rok.
Do produkcji sadzonek wielokoronowych w szkółkach sadzonek (zielonych, pojemnikowych, podwójnych frigo) dopuszcza się używanie sadzonek zielonych, pojemnikowych lub sadzonek frigo. Sadzonki wielokoronowe wytwarzane w szkółkach sadzonek: zielone, pojemnikowe, frigo i podwójne frigo są oceniane w stopniu kwalifikacji dla sadzonek otrzymanych po rozmnażaniu na plantacji matecznej sadzonek.
Na polu przeznaczonym do założenia plantacji lub szkółki truskawki nie mogą być uprawiane truskawki, ziemniaki, ogórki, pomidory, len, porzeczki, agrest, maliny i jeżyny przez co najmniej:
1) 4 lata przed jej założeniem;
2) 2 lata przed jej założeniem, jeżeli:
a) pole to zostanie odkażone, w roku poprzedzającym założenie plantacji lub szkółki truskawki, preparatami do dezynfekcji gleby lub
b) na polu zastosuje się przynajmniej 2 cykle uprawy na przyoranie gorczycy sarepskiej, w roku poprzedzającym założenie plantacji lub szkółki truskawki.
5. Zdrowotność – rośliny mateczne i sadzonki truskawek powinny być:
1) wolne od organizmów kwarantannowych;
2) na podstawie wizualnej oceny – praktycznie wolne od organizmów, które mogą obniżyć ich jakość, w szczególności od organizmów wymienionych w części C w dziale II oraz od:
a) wirusów i patogenów wirusopodobnych:
– wirusa mozaiki gęsiówki (Arabic mosaic virus),
– wirusa pierścieniowej plamistości maliny (Raspberry ringspot virus),
– wirusa czarnej plamistości pierścieniowej pomidora (Tomato black ring virus),
– wirusa marszczycy liści truskawki (Strawberry crinkle virus),
– utajonego wirusa pierścieniowej plamistości truskawki (Strawberry latent ringspot virus),
– wirusa żółtobrzeżności liści truskawki (Strawberry mild yellow edge virus),
– wirusa cętkowanej plamistości liści truskawki (Strawberry mottle virus),
– wirusa otaśmienia nerwów liści truskawki (Strawberry vein banding virus),
– fitoplazmy zielenienia płatków truskawki (Strawberry green petal phytoplasma),
– fitoplazmy żółtaczki astra (Aster yellows phytoplasma),
– patogena wywołującego żółtaczkę czerwcową (Strawberry june yellows),
b) chorób:
– zgnilizny korony truskawki (Phytophthora cactorum),
– werticiliozy truskawki (Verticillium dahliae),
– antraknozy (Colletotrichum spp.),
– białej plamistości liści truskawki (Mycosphaerella fragariae),
– mączniaka prawdziwego truskawki (Sphaerotheca macularis ssp. fragariae),
– czerwonej plamistości liści truskawki (Diplocarpon earliana),
c) szkodników:
– guzaków (Meloidogyne spp.),
– niszczyka zjadliwego (Ditylenchus dipsaci),
– węgorka chryzantemowca (Aphelenchoides ritzemabosi),
– węgorka truskawkowca (Aphelenchoides fragariae),
– roztocza truskawkowego (Phytonemus pallidus ssp. fragariae),
– mszyc (Aphididae),
– skoczkowatych (Jassidae),
– wciornastkowatych (Thripidae),
– przędziorka chmielowca (Tetranychus urticae).
6. Wymagania dodatkowe
Plantacje i szkółki zgłasza się do jednej oceny rocznie, wykonywanej latem albo jesienią, przed kopaniem sadzonek albo sprzedażą roślin utrzymywanych w pojemnikach.
W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.
Każda odmiana powinna być oznaczona etykietami na początku rzędu lub kwatery.
X. Plantacje mateczne i szkółki porzeczek oraz agrestu
1. Rozmnażanie
Dla porzeczek oraz agrestu stosuje się cztery stopnie kwalifikacji:
1) superelita (SE) – materiał przedbazowy;
2) elita 1 (E1) – materiał bazowy;
3) elita 2 (E2) – materiał bazowy;
4) oryginał (O) – materiał kwalifikowany.
2. Izolacja przestrzenna:
1) mateczniki i szkółki elitarne powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 300 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych z rodzaju Ribes;
2) mateczniki i szkółki kwalifikowane powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 100 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych z rodzaju Ribes;
3) mateczniki porzeczki złotej powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 100 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych z rodzaju Ribes;
4) mateczniki i szkółki różnych kategorii i stopni kwalifikacji powinny być oddalone od siebie co najmniej o 3 m.
3. Czystość gatunkowa i odmianowa
Wymagana jest całkowita czystość gatunkowa i odmianowa.
4. Wiek:
1) elitarne mateczniki porzeczek oraz agrestu utrzymuje się do 9 lat, a kwalifikowane – do 13 lat;
2) elitarne mateczniki porzeczki złotej utrzymuje się do 11 lat, a kwalifikowane – do 18 lat;
3) w szkółkach ocenie podlegają rośliny nie starsze niż trzyletnie.
5. Zdrowotność
Rośliny mateczne i sadzonki porzeczek oraz agrestu powinny być:
1) wolne od organizmów kwarantannowych;
2) praktycznie wolne od organizmów, które mogą obniżyć ich jakość, w szczególności od organizmów wymienionych w części C w dziale II oraz od wirusów: utajonego wirusa pierścieniowej plamistości truskawki (Strawberry latent ringspot virus), wirusa pierścieniowej plamistości maliny (Raspberry ringspot virus), wirusa mozaiki gęsiówki (Arabic mosaic virus), Gooseberry vein banding virus, wirusa mozaiki ogórka (Cucumber mosaic virus), rewersji porzeczki czarnej (Black currant reversion virus) – na podstawie wizualnej oceny;
3) praktycznie wolne od innych organizmów, które mogą obniżyć jakość materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych.
6. Wymagania dodatkowe:
1) mateczniki porzeczki oraz agrestu zgłasza się do dwóch ocen rocznie:
a) pierwsza ocena jest wykonywana wiosną – na obecność wielkopąkowca porzeczkowego albo (przemiennie) rewersji dla porzeczek (w terminie: koniec marca, do końca kwitnienia porzeczek) oraz otaśmienia nerwów w matecznikach agrestu (w terminie: maj, do połowy czerwca),
b) druga ocena jest wykonywana w drugiej połowie czerwca – przy rozmnażaniu przez sadzonki zielne i półzdrewniałe albo do końca sierpnia przy innych sposobach rozmnażania;
2) w matecznikach porzeczek należy corocznie pozostawić na każdym krzewie po jednym dobrze wyrośniętym pędzie owocującym w celu wykrycia ewentualnego porażenia przez wielkopąkowca i wirusa rewersji; po dokonaniu oceny pędy te mogą być wycięte;
3) plantacje mateczne porzeczki złotej zgłasza się do jednej oceny rocznie, wykonywanej na początku jesieni, nie później niż do końca września;
4) szkółki porzeczki i agrestu zgłasza się do jednej oceny rocznie, wykonywanej w sierpniu lub we wrześniu; na wniosek producenta rośliny utrzymywane w pojemnikach mogą być oceniane wcześniej.
W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.
Każdy gatunek i każda odmiana powinny być oznaczone etykietami na początku rzędu lub kwatery.
XI. Plantacje mateczne i szkółki malin oraz jeżyn
1. Rozmnażanie
Dla malin oraz jeżyn stosuje się cztery stopnie kwalifikacji:
1) superelita (SE) – materiał przedbazowy;
2) elita 1 (E1) – materiał bazowy;
3) elita 2 (E2) – materiał bazowy;
4) oryginał (O) – materiał kwalifikowany.
2. Izolacja przestrzenna:
1) mateczniki i szkółki elitarne powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 200 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych z rodzaju Rubus;
2) mateczniki i szkółki kwalifikowane powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 50 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych z rodzaju Rubus;
3) odstępy między odmianami, stopniami kwalifikacji lub kategoriami nie powinny być mniejsze niż 3 m.
3. Czystość gatunkowa i odmianowa
Wymagana jest całkowita czystość gatunkowa i odmianowa.
4. Wiek:
1) mateczniki utrzymuje się do 8 lat;
2) odrosty korzeniowe w matecznikach nie mogą być starsze niż jednoroczne;
3) sadzonki w pojemnikach nie mogą być starsze niż dwuletnie.
5. Zdrowotność Rośliny mateczne i sadzonki malin oraz jeżyn powinny być:
1) wolne od organizmów kwarantannowych;
2) na podstawie wizualnej oceny – praktycznie wolne od organizmów, które mogą obniżyć ich jakość, w szczególności od organizmów wymienionych w części C w dziale II oraz od:
a) wirusów i patogenów wirusopodobnych:
– wirusa mozaiki gęsiówki (Arabic mosaic virus),
– wirusa pierścieniowej plamistości maliny (Raspberry ringspot virus),
– wirusa czarnej plamistości pierścieniowej pomidora (Tomato black ring virus),
– utajonego wirusa pierścieniowej plamistości truskawki (Strawberry latent ringspot virus),
– wirusów wywołujących mozaikę maliny (Raspberry mosaic),
– wirusa liściozwoju czereśni (Cherry leaf roll virus),
– wirusa karłowatości krzaczastej maliny (Raspberry bushy dwarf virus),
– fitoplazmy karłowatości maliny (Rubus stunt phytoplasma),
b) chorób grzybowych i bakteryjnych:
– zamierania pędów maliny (Didymella applanata),
– werticyliozy (Verticillium spp.),
– mączniaka prawdziwego (Sphareotheca macularis),
– włosowatości korzeni (Agrobacterium rhizogenes),
– guzowatości korzeni (Agrobacterium tumefaciens),
– staśmienia łodyg (Rhodococcus fascians),
c) szkodników:
– korzeniaka szkodliwego (Pratylenchus penetrans),
– mszyc (Aphidodea),
– przebarwiacza malinowego (Phyllocoptes gracilis),
– wciornastkowatych (Thripidae),
– skoczkowatych (Jassidae),
– przędziorka chmielowca (Tetranychus urticae).
6. Wymagania dodatkowe:
1) mateczniki zgłasza się do jednej oceny w roku, którą wykonuje się:
a) w czerwcu – dla pozyskiwania sadzonek zielnych,
b) do połowy września – dla pozostałych mateczników;
2) plantacje mateczne należy prowadzić bez pędów owocujących; owocowanie odmian powtarzających jest dopuszczalne;
3) szkółki w pojemnikach zgłasza się do jednej oceny w roku, wykonywanej pod koniec lata; owocowanie odmian powtarzających jest dopuszczalne.
Na wniosek producenta rośliny utrzymywane w pojemnikach mogą być oceniane wcześniej. W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny. Każdy gatunek i każda odmiana powinny być oznaczone etykietami na początku rzędu lub kwatery.
XII. Plantacje mateczne i szkółki borówki oraz żurawiny wielkoowocowej
1. Rozmnażanie
Dla borówki oraz żurawiny wielkoowocowej stosuje się cztery stopnie kwalifikacji:
1) superelita (SE) – materiał przedbazowy:
2) elita 1 (E1) – materiał bazowy;
3) elita 2 (E2) – materiał bazowy;
4) oryginał (O) – materiał kwalifikowany.
2. Izolacja przestrzenna:
1) mateczniki i szkółki elitarne powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 50 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych z rodzaju Vaccinium spp.;
2) mateczniki i szkółki kwalifikowane powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 20 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych z rodzaju Vaccinium spp.;
3) mateczniki i szkółki elitarne od mateczników i szkółek kwalifikowanych są oddalone co najmniej o 3 m.
3. Czystość odmianowa
Wymagana jest całkowita czystość odmianowa.
4. Wiek:
1) elitarne mateczniki borówki oraz żurawiny wielkoowocowej utrzymuje się przez 13 lat, a kwalifikowane przez 18 lat;
2) w szkółkach ocenie podlegają rośliny nie starsze niż trzyletnie.
5. Zdrowotność
Rośliny mateczne i sadzonki borówki oraz żurawiny wielkoowocowej powinny być:
1) wolne od organizmów kwarantannowych;
2) na podstawie wizualnej oceny – praktycznie wolne od organizmów wymienionych w części C w dziale II oraz od:
a) szkodników: mszyc (Aphidodea),
b) szkodników borówki:
– pryszczarka borówkowca (Dasyneura vaccinii),
– szpeciela pączkowego (Acalitus vaccinii),
– zwójki różóweczki (Archip. rosanus),
c) choroby bakteryjnej, którą jest guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens),
d) chorób grzybowych:
– zgorzeli pędów borówki (Godronia cassandrae),
– zgnilizny korzeni (Phytophthora spp.),
– zamierania wierzchołków pędów żurawiny (Phomopsis vaccinii),
– zamierania pędów borówki (Botryosphaeria dothidea),
– różowatości kwiatów (Exobasidium oxycocci),
e) wirusów i patogenów wirusopodobnych:
– wirusa nitkowatości borówki (Blueberry shoestring virus),
– fitoplazmy miotlastości borówki (Blueberry witches broom phytoplasma),
– wirusa pierścieniowej plamistości tytoniu (Tobacco ringspot virus);
3) praktycznie wolne od innych organizmów, które mogą obniżyć jakość materiału siewnego kategorii elitarny lub kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych.
6. Wymagania dodatkowe
Po wejściu roślin matecznych w owocowanie sprawdza się tożsamość odmianową w okresie kwitnienia i owocowania:
1) mateczniki borówki oraz żurawiny wielkoowocowej zgłasza się do dwóch ocen rocznie, które wykonuje się:
a) wiosną (maj, do końca czerwca) – na obecność chorób wirusowych,
b) w drugiej połowie czerwca – przy rozmnażaniu przez sadzonki zielne i półzdrewniałe albo do końca sierpnia – przy innych sposobach rozmnażania;
2) szkółki borówki i żurawiny wielkoowocowej zgłasza się do jednej oceny rocznie, wykonywanej w sierpniu lub we wrześniu.
Na wniosek producenta rośliny utrzymywane w pojemnikach mogą być oceniane wcześniej.
W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.
Każdy gatunek i każda odmiana powinny być oznaczone etykietami na początku rzędu lub bloku.
XIII. Pozostałe gatunki
1. Izolacja przestrzenna
Rośliny tych gatunków powinny rosnąć w odległości co najmniej 10 m od roślin dziko rosnących lub owocujących tego samego gatunku lub rodzaju.
2. Czystość gatunkowa i odmianowa
Wymagana jest całkowita czystość gatunkowa i odmianowa.
3. Zdrowotność:
1) materiał siewny kategorii elitarny i kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych tych gatunków powinien być:
a) wolny od organizmów kwarantannowych,
b) praktycznie wolny od organizmów, które mogą obniżyć jakość materiału siewnego kategorii elitarny i kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych, a w szczególności od organizmów wymienionych w części C w dziale II; na podstawie wizualnej oceny;
2) choroby wirusowe i wirusopodobne roślin cytrusowych:
a) materiał powinien pochodzić z materiału wyjściowego, który został oceniony i uznany za niewykazujący objawów chorób wirusowych i wirusopodobnych;
b) materiał powinien zostać poddany indywidualnemu badaniu z użyciem metod do wykrywania takich wirusów i patogenów wirusopodobnych lub chorób i zostać uznany za wolny od nich,
c) materiał powinien być oceniony i zostać uznany za wolny od takich wirusów i patogenów wirusopodobnych lub chorób od ostatniego cyklu wegetacyjnego,
d) materiał powinien zostać zaszczepiony na podkładkach innych niż podatne na wiroidy – w przypadku szczepienia.
4. Wymagania dodatkowe Plantację zgłasza się do jednej oceny rocznie, wykonywanej pod koniec lata albo na początku jesieni, przed zakończeniem wegetacji roślin. W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.
Każdy gatunek i każda odmiana powinny być oznaczone etykietami na początku rzędu lub kwatery.
B. Jakość materiału siewnego kategorii elitarny i kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych
I. Materiał siewny kategorii elitarny i kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych powinien spełniać wymagania jakościowe:
1) pełnej czystości gatunkowej i odmianowej;
2) właściwego wyglądu gatunku i odmiany;
3) być praktycznie wolny od uszkodzeń fizycznych, mechanicznych albo chemicznych;
4) być praktycznie wolny od jakichkolwiek wad wynikających z rozmnażania, które mogłyby obniżyć jego przydatność i jakość;
5) być przygotowany w postaci jednorodnych partii; w przypadku łączenia partii zachowuje się dane o składzie partii i pochodzeniu poszczególnych składników;
6) być wolny od organizmów kwarantannowych;
7) być praktycznie wolny od organizmów wymienionych w części C w dziale II;
8) być praktycznie wolny od innych organizmów, które mogą obniżyć jakość materiału siewnego kategorii elitarny i kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych.
II. Materiał siewny kategorii elitarny i kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych powinien spełniać minimalne wymagania jakościowe:
1. Dla drzewek owocowych:
1) wysokość drzewka powinna wynosić nie mniej niż 80 cm, mierząc od szyjki korzeniowej;
2) średnica pnia powinna wynosić nie mniej niż 8 mm, mierząc na wysokości 10 cm powyżej miejsca uszlachetniania;
3) drzewka powinny mieć korzeń główny i nie mniej niż 3 korzenie boczne albo wiązkę korzeni drobnych, albo korzenie przerastające całą objętość gleby w pojemniku.
2. Dla krzewów jagodowych, z wyłączeniem borówki i żurawiny wielkoowocowej:
1) krzewy powinny mieć minimum jeden pęd o długości co najmniej 20 cm, mierząc od nasady do jego wierzchołka, albo dobrze wykształcone pąki nasadowe;
2) średnica pędu powinna wynosić nie mniej niż 4 mm, mierząc u nasady pędu;
3) krzewy powinny mieć nie mniej niż 3 korzenie szkieletowe albo wiązkę korzeni drobnych, albo korzenie przerastające całą objętość gleby w pojemniku.
3. Dla sadzonek borówki i żurawiny wielkoowocowej:
1) sadzonki powinny mieć minimum jeden pęd o długości co najmniej 20 cm, a w przypadku sadzonek żurawiny wielkoowocowej – 10 cm, mierząc pęd główny od nasady do jego wierzchołka;
2) średnica pędu powinna wynosić nie mniej niż 3 mm, a w przypadku sadzonek żurawiny wielkoowocowej – 1 mm, mierząc pęd na wysokości 5 cm od jego nasady;
3) sadzonki powinny mieć wiązkę korzeni drobnych albo korzenie przerastające całą objętość gleby w pojemniku.
4. Dla sadzonek truskawek:
1) sadzonki powinny mieć co najmniej dwa w pełni wykształcone liście albo średnicę korony o grubości nie mniejszej niż 4 mm;
2) sadzonki powinny mieć nie mniej niż 4 korzenie szkieletowe albo wiązkę korzeni drobnych, albo korzenie przerastające całą objętość gleby w pojemniku.
5. Dla podkładek generatywnych i wegetatywnych:
1) wysokość dla podkładek wegetatywnych powinna wynosić nie mniej niż 30 cm, mierząc od nasady pędu do jego wierzchołka;
2) wysokość dla podkładek generatywnych powinna wynosić nie mniej niż 20 cm, mierząc od szyjki korzeniowej do wierzchołka pędu;
3) średnica powinna wynosić nie mniej niż 3 mm, mierząc bezpośrednio nad szyjką korzeniową;
4) podkładki powinny mieć nie mniej niż 3 korzenie szkieletowe albo wiązkę korzeni drobnych, albo korzenie przerastające całą objętość gleby w pojemniku.
6. Dla zrazów:
1) długość powinna wynosić nie mniej niż 30 cm;
2) średnica powinna wynosić nie mniej niż 4 mm;
3) powinny mieć co najmniej 5 oczek.
7. Dla innych sadzonek:
1) długość powinna wynosić nie mniej niż 12 cm;
2) średnica powinna wynosić nie mniej niż 4 mm;
3) powinny mieć co najmniej 3 oczka.
8. Dla oczek – powinna być określona liczba wykształconych oczek.
9. Dostawcy mogą zgodnie z wymaganiami określonymi w ust. 1–8 ustalać własne klasy jakości dla materiału siewnego roślin sadowniczych wprowadzanego do obrotu.
C. Minimalne wymagania dla materiału szkółkarskiego CAC
I. Materiał szkółkarski CAC powinien spełniać wymagania jakościowe:
1) odpowiedniej czystości gatunkowej i odmianowej;
2) właściwego wyglądu gatunku i odmiany;
3) być praktycznie wolny od uszkodzeń fizycznych, mechanicznych albo chemicznych;
4) być praktycznie wolny od jakichkolwiek wad wynikających z rozmnażania, które mogłyby obniżyć jego przydatność i jakość;
5) być przygotowany w postaci jednorodnych partii; w przypadku łączenia partii zachowuje się dane o składzie partii i pochodzeniu poszczególnych składników;
6) być wolny od organizmów kwarantannowych;
7) być praktycznie wolny od organizmów wymienionych w dziale II;
8) być praktycznie wolny od organizmów innych niż wymienione w dziale II, które mogą obniżyć jakość materiału szkółkarskiego CAC.
II. Wykaz organizmów szkodliwych obniżających jakość materiału siewnego kategorii elitarny i kategorii kwalifikowany roślin sadowniczych, materiału szkółkarskiego CAC
1. Lima Citrus aurantifolia (Christm) Swing, cytryna zwyczajna Citrus limon L. Burm. F, grejpfrut Citrus paradisi Maef, mandarynka Citrus reticulata Blanco, pomarańcza chińska Citrus sinensis (L.) Osbeck
1) szkodniki:
a) Aleurotrixus floccosus (Mashell),
b) mątwiki Meloidogyne spp.,
c) Parabernisia myricae (Kuwana),
d) Tylenchulus semipenetrans;
2) choroby grzybowe: Phytophthora spp.;
3) choroby wirusowe i wirusopodobne:
a) Citrus leaf rugose,
b) choroby, które wywołują psorosis i podobne objawy na młodych liściach, jak: ring spot, cristacortis, impietratura, concave gum oraz ich czynniki sprawcze,
c) wirody takie, jak: exocortis, cachexiaxyloporosis.
2. Leszczyna (Corylus avellana L.)
1) szkodniki:
a) wielkopąkowiec leszczynowy (Phytoptus avellanae),
b) tarczniki (Quadraspidiotus perniciosus, Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona);
2) choroby bakteryjne:
a) guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens),
b) bakteryjna zgorzel leszczyny (Xanthomonas campestris pv. corylina);
3) choroby grzybowe:
a) opieńka miodowa (Armillariella mellea),
b) srebrzystość liści (Chondrostereum purpureum),
c) rak drzew owocowych (Nectria galligena),
d) Phyllactinia guttata,
e) werticilioza (Verticillium spp.);
4) choroby wirusowe i wirusopodobne:
a) mozaika leszczyny (Apple mosaic virus),
b) Hazel maculatura lineare – MLO.
3. Pigwa (Cydonia Miller), grusza (Pyrus communis L.)
1) szkodniki:
a) skośnik brzoskwiniaczek (Anarsia lineatella),
b) bawełnica korówka (Eriosoma lanigerum),
c) tarczniki (Quadraspidiotus perniciosus, Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona i inne);
2) choroby bakteryjne:
a) guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens),
b) rak bakteryjny (Pseudomonas syringae pv. syringae);
3) choroby grzybowe:
a) opieńka miodowa (Armillariella mellea),
b) srebrzystość liści (Chondrostereum purpureum),
c) rak drzew owocowych (Nectria galligena, Phytophthora spp.),
d) biała zgnilizna korzeni (Rosellinia necatrix),
e) werticilioza (Verticillium spp.);
4) choroby wirusowe i wirusopodobne – wszystkie.
4. Truskawka (Fragaria x ananassa Duch.)
1) szkodniki:
a) węgorki (Apchelenchoides spp.),
b) niszczyk zjadliwy (Ditylenchus dipsaci),
c) Tarsonemidae;
2) choroby grzybowe:
a) zgnilizna korony truskawki (Phytophthora cactorum),
b) werticilioza (Verticillium spp.);
3) choroby wirusowe i wirusopodobne: zielenienie płatków truskawki (Strawberry green petal phytoplasma MLO).
5. Orzech włoski (Juglans regia L.)
1) szkodniki: tarczniki (Quadraspidiotus perniciosus, Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona i inne);
2) choroby bakteryjne:
a) guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens),
b) bakteryjna zgorzel orzecha włoskiego (Xanthomonas campestris pv. juglandi);
3) choroby grzybowe:
a) opieńka miodowa (Armillariella mellea),
b) rak drzew owocowych (Nectria galligena),
c) srebrzystość liści (Chondrostereum purpureum),
d) zgnilizna podstawy pnia (Phytophthora spp.);
4) choroby wirusowe i wirusopodobne: liściozwój czereśni (Cherry leaf roll virus).
6. Jabłoń (Malus Mill.)
1) szkodniki:
a) skośnik brzoskwiniaczek (Anarsia lineatella),
b) bawełnica korówka (Eriosoma lanigerum),
c) tarczniki (Quadraspidiotus perniciosus, Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona i inne);
2) choroby bakteryjne:
a) guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens),
b) rak bakteryjny (Pseudomonas syringae pv. syringae);
3) choroby grzybowe:
a) opieńka miodowa (Armillariella mellea),
b) srebrzystość liści (Chondrostereum purpureum),
c) rak drzew owocowych (Nectria galligena),
d) zgnilizna pierścieniowa podstawy pnia (Phytophthora cactorum),
e) biała zgnilizna korzeni (Rosellinia necatrix),
f) parch (Venturia spp.),
g) werticilioza (Verticillium spp.);
4) choroby wirusowe i wirusopodobne – wszystkie.
7. Oliwka europejska (Olea europaea L.)
1) szkodniki:
a) Eusophera pinguis,
b) guzaki (Meloidogyne spp.),
c) misecznik oliwkowiec (Saissetia oleae);
2) choroby grzybowe i bakteryjne:
a) Verticillium dabliae,
b) Pseudomonas syringae pv. savastanoi;
3) choroby wirusowe i wirusopodobne – wszystkie.
8. Pistacja właściwa (Pistacia vera L.)
1) choroby grzybowe i bakteryjne: Verticillium spp.;
2) choroby wirusowe i wirusopodobne – wszystkie.
9. Śliwa (Prunus domestica L.), śliwa japońska (Prunus salicina Lindl.)
1) szkodniki:
a) pordzewiacz śliwowy (Aculus fockeui),
b) czerniec ciemny (Capnodis tenebrionis),
c) szpeciel śliwowy (Eriophyes similis),
d) guzaki (Meloidogyne spp.),
e) tarczniki (Quadraspidiotus perniciosus, Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona i inne);
2) choroby bakteryjne:
a) guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens),
b) rak bakteryjny drzew pestkowych (Pseudomonas syringae pv. syringae, Pseudomonas syringae pv. mors prunorum);
3) choroby grzybowe:
a) opieńka miodowa (Armillariella mellea),
b) srebrzystość liści (Chondrostereum purpureum),
c) rak drzew owocowych (Nectria galligena),
d) biała zgnilizna korzeni (Rosellinia necatrix),
e) werticilioza (Verticillium spp.);
4) choroby wirusowe i wirusopodobne:
a) karłowatość śliwy (Prune dwarf virus),
b) nekrotyczna plamistość pierścieniowa wiśni (Prunus necrotic ringspot virus).
10. Brzoskwinia (Prunus persica (L.) Batsch), morela (Prunus armeniaca L.), migdałowiec (Prunus amygdalus Batsch)
1) szkodniki:
a) skośnik brzoskwiniaczek (Anarsia lineatella),
b) czerniec ciemny (Capnodis tenebrionis),
c) guzaki (Meloidogyne spp.),
d) tarczniki (Quadraspidiotus perniciosus, Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona i inne);
2) choroby bakteryjne:
a) guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens),
b) rak bakteryjny drzew pestkowych (Pseudomonas syringae pv. syringae, Pseudomonas syringae pv. mors prunorum);
3) choroby grzybowe:
a) opieńka miodowa (Armillariella mellea),
b) srebrzystość liści (Chondrostereum purpureum),
c) rak drzew owocowych (Nectria galligena),
d) biała plamistość korzeni (Rosellinia necatrix),
e) kędzierzawka liści brzoskwiń (Taphrina deformans),
f) werticilioza (Verticillium spp.);
4) choroby wirusowe i wirusopodobne:
a) karłowatość śliwy (Prune dwarf virus),
b) nekrotyczna plamistość pierścieniowa wiśni (Prunus necrotic ringspot virus).
11. Wiśnia (Prunus cerasus L.), czereśnia (Prunus avium (L.) L.)
1) szkodniki:
a) czerniec ciemny (Capnodis tenebrionis),
b) guzaki (Meloidogyne spp.),
c) tarczniki (Quadraspidiotus perniciosus, Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona i inne);
2) choroby bakteryjne:
a) guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens),
b) rak bakteryjny drzew pestkowych (Pseudomonas syringae pv. syringae, Pseudomonas syringae pv. mors prunorum);
3) choroby grzybowe:
a) opieńka miodowa (Armillariella mellea),
b) srebrzystość liści (Chondrostereum purpureum),
c) rak drzew owocowych (Nectria galligena),
d) biała plamistość korzeni (Rosellinia necatrix),
e) werticilioza (Verticillium spp.);
4) choroby wirusowe i wirusopodobne:
a) karłowatość śliwy (Prune dwarf virus),
b) nekrotyczna plamistość pierścieniowa wiśni (Prunus necrotic ringspot virus).
12. Porzeczki, agrest (Ribes spp. L.)
1) szkodniki:
a) węgorki (Apchelenchoides spp.),
b) wielkopąkowiec porzeczkowy (Cecidophyopsis ribis);
2) choroby bakteryjne: guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens);
3) choroby grzybowe:
a) opieńka miodowa (Armillariella mellea),
b) gruzłek cynobrowy (Nectria cinnabarina),
c) biała zgnilizna korzeni (Rosellinia necatrix),
d) werticilioza (Verticillium spp.);
4) choroby wirusowe i wirusopodobne: rewersja porzeczki czarnej (Black currant reversion, Black currant infectious variegation agent).
13. Malina, jeżyna (Rubus spp. L.)
1) szkodniki: szpeciel jeżynowiec (Aceria essigi);
2) choroby bakteryjne:
a) włosowatość korzeni (Agrobacterium rhizogenes),
b) guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens),
c) staśmienie łodyg (Rhodococcus fascians);
3) choroby grzybowe:
a) opieńka miodowa (Armillariella mellea),
b) zamieranie pędów malin (Didymella applanata),
c) mączniak rzekomy maliny (Peronospora rubi),
d) zgnilizna korzeni malin (Phytophthora fragariae var. rubi),
e) werticilioza (Verticillium spp.);
4) choroby wirusowe i wirusopodobne:
a) krzaczasta karłowatość maliny (Raspberry bushy dwarf virus),
b) kędzierzawka maliny (Raspberry leaf curl virus).
14. Borówka, żurawina (Vaccinium spp. L.)
1) szkodniki:
a) pryszczarek borówkowiec (Dasyneura vaccinii),
b) szpeciel pączkowy (Acalitus vaccinii);
2) choroby grzybowe:
a) zgorzel pędów borówki (Godronia cassandrae),
b) zgnilizna korzeni (Phytophthora spp.);
3) wirusy i patogeny wirusopodobne: fitoplazma miotlastości borówki (Blueberry witches broom phytoplasma).
15. Dodatkowe wymagania dla roślin cytrusowych:
1) materiał powinien pochodzić z materiału wyjściowego, który został oceniony i uznany za niewykazujący objawów występowania wirusów lub chorób wirusopodobnych;
2) materiał powinien zostać poddany indywidualnemu badaniu z użyciem metod do wykrywania wirusów i patogenów wirusopodobnych lub chorób i zostać uznany za wolny od nich;
3) materiał powinien być oceniony i zostać uznany za wolny od wirusów i patogenów wirusopodobnych lub chorób od ostatniego cyklu wegetacyjnego;
4) materiał powinien zostać zaszczepiony na podkładki inne niż podatne na wiroidy – w przypadku szczepienia.
1) Wiek – liczba lat wyrażona liczbą okresów wegetacyjnych, dla:
2) Materiał wolny od wirusów (ww, vf): materiał szkółkarski, który został poddany testowaniu i uznany za wolny od wirusów dla poszczególnych gatunków w tym statusie; jest to również materiał otrzymany bezpośrednio z materiału wolnego od wirusów, produkowany lub utrzymywany w określonej liczbie pokoleń, w warunkach gwarantujących niewystąpienie infekcji.
Załącznik nr 5
SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA I JAKOŚCI SADZONEK WINOROŚLI
I. Wytwarzanie
1. Izolacja przestrzenna: mateczniki i szkółki winorośli powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 10 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych z rodzaju Vitis.
2. Czystość gatunkowa i odmianowa:
1) wymagana jest pełna czystość gatunkowa i odmianowa;
2) sadzonki mogą być roślinami własnokorzeniowymi lub szczepionymi na podkładkach odpornych na filokserę winiec.
3. Wiek:
1) mateczniki winorośli utrzymuje się do 15 lat;
2) w szkółkach sadzonki winorośli nie mogą być starsze niż trzyletnie.
4. Zdrowotność
Rośliny mateczne i sadzonki winorośli powinny być:
1) wolne od organizmów kwarantannowych;
2) praktycznie wolne od organizmów, które mogą obniżyć jakość sadzonek winorośli – na podstawie wizualnej oceny.
II. Jakość
Materiał rozmnożeniowy winorośli powinien spełniać wymagania jakościowe:
1) pełnej czystości gatunkowej i odmianowej;
2) właściwego wyglądu gatunku i odmiany;
3) być praktycznie wolny od uszkodzeń fizycznych, mechanicznych lub chemicznych;
4) być praktycznie wolny od wad wynikających z rozmnażania, które mogłyby obniżyć jego przydatność i jakość;
5) być przygotowany w postaci jednorodnych partii;
6) być wolny od organizmów kwarantannowych;
7) być praktycznie wolny od organizmów, które mogą obniżyć jakość sadzonek winorośli;
8) powinien mieć minimum jeden pęd o długości co najmniej 20 cm, mierząc od nasady do jego wierzchołka;
9) średnica pędu powinna wynosić nie mniej niż 4 mm, mierząc u nasady pędu;
10) powinien mieć:
a) nie mniej niż 3 korzenie szkieletowe o długości co najmniej 15 cm albo
b) wiązkę korzeni drobnych nie krótszych niż 6 cm – dla sadzonek wykopywanych ze szkółki, albo
c) korzenie przerastające całą objętość gleby – dla sadzonek utrzymywanych w pojemnikach.